Лекції-Долікарська допомога

1.doc (7 стор.)
Оригінал

Долікарська допомога

1. Асептика і антисептика.

1.1. Визначення поняття. Історія питання.

1.2. Шляхи поширення інфекції.

1.3. Профілактика контактної та імплантаційної інфекції. Стерилізація та дезінфекція.

1.4. Види антисептики

1.4.1. Механічна антисептика

1.4.2. Фізична антисептика

1.4.3. Хімічна антисептика

1.4.4. Біологічна антисептика

2. Десмургія.

2.1. Загальні питання десмургії.

2.2. Пов'язки на різні області тіла.

3. Рани, рановий процес. Види загоєння ран.

3.1. Визначення поняття. Класифікація.

3.2. Види загоєння ран.

3.3. Долікарська допомога при пораненнях.

4. Кровотечі і крововтрата.

4.1. Класифікація кровотеч.

4.2. Долікарська допомога при кровотечах.

5. Пошкодження опорно-рухового апарату. Транспортна іммобілізація.

5.1. Забої. Розтягування. Вивихи.

5.2. Клінічна картина переломів.

5.3. Перша допомога при переломах. Транспортна іммобілізація.

6. Пошкодження грудної клітки.

6.1. Класифікація

6.2. Переломи ребер

6.3. Пневмоторакс

7. Опіки. Відмороження.

7.1. Опіки.

7.1.1. Класифікація опіків

7.1.2. Визначення глибини ураження

7.1.3. Долікарська допомога при опіках

7.2. Відмороження.

7.2.1. Причини відморожень і їх класифікація

7.2.2. Допомога при відмороженнях

8. Політравма. Масові ураження.

8.1. Політравма, принцип взаімоотягощенія

8.2. Організація допомоги при масових ураженнях

9. Гострі хірургічні захворювання органів черевної порожнини.

10. Деякі види гострої хірургічної інфекції.

11. Гострі захворювання серцево-судинної системи.

11.1. Стенокардія

11.2. Інфаркт міокарда

11.3. Колапс

11.4. Гіпертонічний криз

12. Гостра дихальна недостатність

12.1. Напад бронхіальної астми

12.2. Порушення прохідності верхніх дихальних шляхів

13. Діабетичні коми.

13.1. Гіперглікемічна кома

13.2. Гіпоглікемічнустан

14. Гострі отруєння.

15. Порушення свідомості

15.1. Загальні питання

15.2. Непритомність

15.3. Кома

16. Критичні стани. Загальні питання реанімації.

16.1. Класифікація критичних станів

16.2. Серцево-легенева реанімація

17. Анафілактичний шок
1. Асептика і антисептика.

1.1. Визначення поняття. Історія питання.

1.2. Шляхи поширення інфекції.

1.3. Профілактика контактної та імплантаційної інфекції. Стерилізація та дезінфекція.

1.4. Види антисептики

1.4.1. Механічна антисептика

1.4.2. Фізична антисептика

1.4.3. Хімічна антисептика

1.4.4. Біологічна антисептика

^ 1.1. Визначення поняття. Історія питання.

Асептика-система профілактичних заходів, спрямованих на попередження попадання мікроорганізмів в рану, тканини, органи при операціях і маніпуляціях.
Антисептика - комплекс лікувально-профілактичних заходів, спрямований на знищення мікроорганізмів. Потрапили в рану або створення умов сприяють їх знищенню.
Це поділ до деякої міри умовно і в ряді випадків поділ асептики і антисептики утруднено.
Багато лікарі ще в давнину чисто емпірично прийшли до висновку про необхідність знезараження ран. Для цієї мети застосовували припікання рани розпеченим залізом, киплячим маслом, тобто в сучасному понятті використовували фізичну антисептику; застосовували оцет, вапно, різні бальзамічні мазі, тобто використовували хімічну антисептику. Відомості про застосування цих методів знезараження ран знаходимо в працях найдавніших вчених Гіппократа, Цельса, Ібн-Сіни.
В1843 Холмс, а 1847р. Земельвейс запропонували для знезараження рук акушерів застосовувати розчин хлорного вапна. Н.И.Пирогов рекомендував використовувати для знезараження ран настоянку йоду, розчин азотнокислого срібла, спирту. Але ці пошуки також були емпіричними.
Походження терміну і розвиток методу Антисептики багато в чому пов'язане з ім'ям Луї Пастера, який в 1863 році, довів, що гниття і бродіння обумовлені попаданням і життєдіяльністю мікроорганізмів.
Перенісши ідею Пастера в хірургію Лістер дав наукове обгрунтування нагноєння ран, пояснивши його попаданням і розвитком у ній бактерій.
Своєю працею "Про новий спосіб лікування переломів і гнійників з зауваженнями про причини нагноєнь" (1867г.), в якому були викладені принципи його вчення, Лістер зробив переворот у хірургії, відкривши нову «антисептичну» еру. З метою знищення мікробів Лістер запропонував знезаражувати повітря операційної розпиленням з пульверизатора розчину карболової кислоти (фенолу), всі інструменти і рана стерилізувалися із застосуванням 3-5% карболової кислоти, на рану після операції також, накладалася пов'язка, просочена карболової кислотою і смолами. Метод Лістера об'єднував в собі принципи асептики "Все, що стикається з раною, повинно бути стерильним" і антисептики. Застосування цієї методики призвело до різкого зменшення нагноєнь і летальних результатів і швидко знайшло велику кількість прихильників. У Росії цей метод вперше був застосований І.І.Бурцевим в 1870р. Однак, широке застосування Лістера виявило і його недоліки: карболова кислота викликала великі некрози в області рани, дерматози та екземи у хірургів, а враховуючи, що фенол є потужним гемолітичним отрутою, глибокі отруєння у хірургів і хворих.
Це зажадало пошуку нових засобів і методів знищення мікробів і антисептика стала невід'ємною частиною хірургічного лікувального методу.
Метод асептики є подальшим розвитком методу антисептики і тісно пов'язаний з ним. Основоположниками асептики є німецькі вчені хірурги Бергман і Шиммельбуша, а в Росії М.С. Суботін і П.І. Дьяконов.
У 1890 році на 10 Міжнародному конгресі лікарів у Берліні Бергманом був вперше проголошений основний закон асептики - "Все, що проходить в зіткнення з раною повинно бути вільно від бактерій".

На початку метод асептики був направлений на оберігання хворого і персоналу від шкідливого впливу фенолу Лістеровской методики, і начисто відмело застосування антисептики. Але надалі було з'ясовано, що одна асептика не в змозі забезпечити профілактику нагноєнь і що необхідно, комплексне застосування асептики і антисептики.
1.2. Шляхи поширення інфекції.

^ ШЛЯХИ ПОШИРЕННЯ ІНФЕКЦІЇ
Бактерії знаходяться у великій кількості на всіх оточуючих людини предметах, в повітрі, на поверхні тіла, у вмісті внутрішніх органів і т. д. Стафілококкова інвазія, що мала провідне значення до середини 60-х років, в даний час поступово замінюється і тісниться грамнегативними бактеріями ( Klebsiella pneumoniae, Enterobacter cloaque, Serratia marcescens, Є. coil, Pseudomonas aeruginosa, Proteus species), грибами та вірусами. Джерела, з яких патогенні бактерії проникають в рану, бувають екзогенними і ендогенними.
Екзогенної вважається інфекція, яка потрапляє в рану із зовнішнього середовища, навколишнього хворого: 1) з повітря - повітряна інфекція, 2) з бризками слини та інших рідин - крапельна інфекція, 3) з предметів, що стикаються з раною - контактна інфекція, 4) з предметів , що залишаються в рані (шви, дренажі, металеві стрижні і платівки, штучні клапани серця, синтетичні протези судин, електрокардіостимулятори і т. д.) - імплантаційна інфекція.
Повітря як засіб передачі інфекції (патогенний стафілокок) відіграє важливу роль, особливо в операційних, реанімаційних відділеннях та відділеннях інтенсивної терапії. Перенесення патогенних мікроорганізмів від хворого до хворого позначається як перехресна інфекція. Із збільшенням тривалості перебування хворого в лікарні ця небезпека зростає, тому необхідно домагатися, щоб час передопераційного обстеження та післяопераційного перебування хворого в стаціонарі було якомога менше. Операційні відділення, приміщення центральної стерилізаційної, відділення інтенсивної терапії, діагностичні кабінети, в яких можливий перехід повітряної і краплинної інфекції від хворого до хворого, від персоналу і відвідувачів до хворого і навпаки, душ і ванни слід розглядати як зони, які потребують особливо ретельному контролі.
Контактна і імплантаційна інфекція в більшості випадків пов'язана з гнильним розпадом тканин, розвитком септицемії і септичного шоку. Збудники інфекції у великій кількості знаходяться в ротовій порожнині, кишечнику, вивідних протоках сальних і потових залоз. Наприклад, синьогнійна паличка добре розвивається в вогкості, тому її найчастіше виявляють в раковинах, ваннах, сечових приймачах, на рушниках, ганчірках, у квіткових горщиках. Клостридії (збудники правця та газової інфекції) обнаружівавются найчастіше в пилу і бруду. Істотне значення має дезінфекція матраців, подушок, ковдр; необхідно для кожного знову надходження хворого мати продезінфіковані постільні речі.
Ендогенної вважається інфекція, що знаходиться всередині організму або на його покривах. Ендогенна інфекція потрапляє в рану або безпосередньо, або з судинних (лімфатичних або кровоносних) шляхах. Основними осередками ендогенної інфекції є: 1) запальні процеси покривного епітелію (фурункули, карбункули, піодермії, екземи і т. д.), 2) вогнищева інфекція шлунково-кишкового тракту (карієс зубів, гінгівіти, холецистити, холангіти, панкреатити і т. д .), 3) інфекція дихальних шляхів (гайморити, фронтити, трахеїти, бронхіти, запалення легенів, бронхоектази, абсцеси легенів), 4) запалення урогенітального тракту (пієліти і цистити, простатити, уретрити, сальпінгоофорити); 5) вогнища невідомої (кріптогенной) інфекції.
Іноді проникаючі в організм патогенні мікроби відмежовуються щільним сполучнотканинним валом. Така дрімаючі або латентна інфекція навколо сторонніх тіл, паразитичних черв'яків (ехінокок) навіть через багато років при зниженні реактивності організму може різко загостритися.
1.3. Профілактика контактної та імплантаційної інфекції. Стерилізація та дезінфекція.

^ ПРОФІЛАКТИКА КОНТАКТНОЇ І імплантаційним ІНФЕКЦІЇ. СТЕРИЛІЗАЦІЯ І ДЕЗІНФЕКЦІЯ
Стерилізація досягається за допомогою фізичних і хімічних методів. До фізичних методів відносяться термічна і променева стерилізація (кип'ятінням, стерилізація парою під тиском, сухожаровий стерилізація, гамма-опромінення). Хімічні методи стерилізації включають в себе стерилізацію окисом етилену, обробку надоцтової кислотою, а також химиотерапевтическую обробку. Крім того, для створення асептичних умов в операційних або в ізоляторах використовують фізіотерапію повітря з метою очищення його від бактерій.
Найбільш надійними вважаються термічні способи стерилізації, променева стерилізація і стерилізація окисом етилену.
При термічних способах стерилізація проводиться або водяною парою в автоклаві при температурі 120-132С (рис. 1), або сухою парою в сухожарових стерилізаторах (шафа) при температурі 170-200 ° С.



Стерилізація парою. Гарячий водяна пара служить переносником тепла. Він діє інтенсивніше, ніж гаряче повітря, так як висока теплоємність пари при конденсації переноситься на стерилізується об'єкт. Одночасно пар діє як безпосередній стерилізуючий агент шляхом гідратірованіем, коагуляції і гідролізу білків



Рис. 16. Схеми (а, б) парового стерилізатора (автоклава):
А - зовнішня стінка стерилізатора; Б - внутрішня стінка стерилізатора; 1 - термометр; 2 - манометр; 3 - джерело тепла; 4 - вступний кран; 5 - випускний кран.
Апарат для стерилізації парою під тиском (автоклав) складається з двох металевих циліндрів різного діаметру, вставлених один в іншій так, що між ними залишається простір, який наповнюється водою (рис. 16). У внутрішню камеру автоклава кладуть стерилізаційні коробки з фільтром, бікси перев'язувального матеріалу або пакети з інструментами в двошаровою упаковці з бязі або в пергаментним папері. Щільно загвинчують бічні двері парового стерилізатора і починають стерилізацію в заданому режимі. Паровий стерилізатор обладнаний термометром, манометром (вказує тиск пари всередині апарату) і запобіжним клапаном, який спрацьовує при наростанні надлишкового тиску.
Автоклавування проводиться при тиску пари 1,1 +0,1 кгс/см2
протягом 45 +3 хв або 2,0 ± 0,1 кгс/см2 протягом 20 +2 хв.
Всі предмети, які не витримують високої температури жарової стерилізації і для яких температура пара не є повреждающей, повинні стерилізуватися автоклавуванням (перев'язувальний матеріал, гумові і синтетичні предмети, паперові фільтри, закриті ампули і банки з водомісткими препаратами та ін.)
Після закінчення стерилізації пар з апарату видаляють через випускний кран у воду і виводять в каналізаційний стік. Відгвинчують бічній люк, випускають залишок пари і протягом деякого часу проводять сушку матеріалу теплом стінок стерилізатора.
Сухожаровий стерилізація. При сухожаровий стерилізації (рис. 17) відбувається розігрівання стерілізуемих об'єктів. Так як гаряче повітря на відміну від водяної пари служить тільки переносником тепла, температура стерілізуемих предметів повинна досягти 170-200 ° С (180 ± 14 ° С) при експозиції 60 +5 хв. Термічне розподілення забезпечують за рахунок надходження нагрітого повітря через спеціальний клапан в нижній частині повітряного стерилізатора, а його вихід - через верхній клапан. При підйомі повітря віддає тепло стерілізуемих об'єктам.
Шляхом сухожаровий стерилізації можна обробляти всі термостабільні, негорючі матеріали зі скла, металу або фарфору. Сухожаровий стерилізація непридатна для перев'язувального матеріалу, гуми, катетерів, виробів з паперу та пластиків. Стерілізуемие об'єкти, наприклад шприци, закладають чистими і сухими в холодний апарат (рис. 18). Додавання нових матеріалів і предметів для стерилізації неприпустимо. Після відключення повітряного стерилізатора необхідно дочекатися зниження температури до 80 ° С. Підключений до електромережі стерилізатор не можна відкривати, так як надходження кисню може привести до займання. Незважаючи на наявність автоматики і програмованого управління, автоклави і сухожарові стерилізатори неприпустимо залишати без нагляду персоналу.
Променева стерилізація. Цей вид стерилізації здійснюється іонізуючим випромінюванням великий енергетичної потужності, проникаючим в стерилізується матеріал на різну глибину. У практичних цілях застосовуються бета-і гамма-випромінювання. Для стерилізації гамма-випромінюванням ізотопами 60Со і 137Cs доза опромінення повинна бути досить значною - не менше 2,5 мрад (25000 Гр), щоб виключити можливість залишення життєздатної Особливо зручна стерилізація гама-випромінюванням сироваток, вакцин, біологічних тканин, лікарських препаратів, медичних виробів одноразового користування (системи для переливання крові, атравматичні голки, трахеостомічні канюлі, електрокардіостимулятори і т. п.). Суттєвою перешкодою до широкого впровадження променевого методу стерилізації є небезпека проникаючої радіації для людей. Це змушує створювати громіздку систему протипроменевого захисту гамма-установок, що під силу тільки потужним спеціалізованим установам.
Можлива також стерилізація ультразвуком. Стерилізатори наповнюють слабким антисептиком (0,05% водний розчин хлоргексидину біглюконат), в якому під впливом ультразвукових хвиль стерилізують хірургічний інструментарій, дрібні пластмасові вироби або виробляють дезінфекцію рук.
Хімічна стерилізація. Збільшення числа приладів і пристроїв, які важко стерилізувати традиційними методами, сприяло появі нових методів стерилізації. Під хімічної (холодної) розуміють стерилізацію за допомогою окису етилену або сильнодіючих антисептиків (0,2% розчин надоцтової кислоти, 6% розчин перекису водню, 0,1%-тергите-ціда, 0,5% спиртовий розчин гибитана, сайдекс, потрійний розчин та ін.) Холодна стерилізація здійснюється в умовах, при яких температура не перевищує температури коагуляції білка (від 45 до 60 ° С; рис. 19).

Рис. 19. Камера для нової стерилізації пароформалінової стерилізації
Окис етилену, що надає бактерицидну дію за рахунок алкілування протеїнів бактерій, розчинна у воді, спиртах. При нормальних атмосферних умовах це безбарвний газ з неприємним ефірподобним запахом.
Застосовуються портативні газові стерилізатори з корисним об'ємом 2-3 л (НДР, УНР). При температурі 55 ° С, концентрації окису етилену 750-1000 мг / л і відповідної вологості газу успішно використовується керована програма стерилізації при невеликому надлишковому тиску, що запобігає випаровування газу. Газові стерилізатори не вимагають великого приміщення, необхідно налагодити лише вентиляцію; після стерилізації газ, що залишився видаляють через випускники камери в витяжні труби.
За допомогою газової стерилізації слід обробляти лише ті предмети, які не витримують стерилізацію в автоклаві або повітряному стерилізаторі. Окисом етилену стерилізують катетери з штучних матеріалів, хірургічні рукавички, протези судин, ендоскопи, кардіостимулятори, окремі вузли респіраторів і апаратів штучного кровообігу з витримкою 6-16 ч. Вироби, простерилізовані газовим методом, застосовують після витримки у вентильованому приміщенні протягом 1-5 сут .
Перевірка якості стерилізації. Речовини і предмети вважаються стерильними, якщо вони в упакованому вигляді оброблені термічним шляхом або опроміненням і якщо ефект стерилізації підтверджений індикатором стерильності. Контроль роботи повітряних і парових стерилізаторів проводять із застосуванням хімічних тест-індикаторів і за допомогою максимальних термометрів.
Показниками якості роботи стерилізаторів є:
зміна вихідного стану (колір, агрегатний стан) хімічних тест-індикаторів та відхилення температури в різних точках камери парового стерилізатора від номінального значення в межах Т ± 2 ° С.
Контроль роботи повітряних стерилізаторів здійснюється кольоровим термоиндикатором ТВК № 6 і гидрохиноном. Нанесена на папір Термоіндикаторна фарба марки ТВК № 6 світло-салатового кольору при температурі 175-180 ° С стає темно-коричневою. Гідрохінон в кількості 0,3 г поміщається в скляний флакон. При температурі 170-175 ° С сіро-коричневий порошок гідрохінону перетворюється на розплавлену масу чорного кольору.
Роботу парового стерилізатора щодня контролюють тест-індикатором сечовини або бензойної кислоти з фуксином. При режимі стерилізації 132 ° С і тиску в 2 ат білий порошок сечовини плавиться, перетворюючись на аморфну масу того ж кольору (у бікси поміщається флакончик з сечовиною в кількості 0,3 г). При режимі стерилізації 120 ° С і тиску в 1,1 ат як індикатор застосовують бензойну кислоту з фуксином, фуксин виконує роль барвника. При температурі, близькій до пару (120 ° С), бензойна кислота з кислим фуксином розплавляються, перетворюючись на аморфну масу червоного кольору, а з основним фуксином - синього кольору. Застосування сірки для контролю ефективності стерилізації не рекомендується.
Контроль за якістю стерилізації окисом етилену проводять з використанням індікоторов у вигляді розчину гліцеролу з етиленом (розчин I) і броміду літію, бромкрезолового пурпурного з етанолом (розчин II).
Крім обов'язкового щоденного контролю ефективності стерилізації в стерилізаторі пробій на досягнення точки плавлення раз на тиждень (вибірково) або через 10 днів проводять бактеріологічний контроль матеріалу. Бактеріологічний контроль є найбільш надійним методом контролю стерильності. Його недоліком є тривалий період і трудомісткість дослідження. У зв'язку з цим у клінічній практиці широко використовуються перераховані експрес-методи.
^ СТЕРИЛІЗАЦІЯ ІНСТРУМЕНТІВ
Використані інструменти піддають передстерилізаційного очищення. Режим очищення складається з промивання їх гарячою водою протягом 30 сек з подальшим замочуванням в спеціальній ємності в миючому розчині (температура миючого розчину 50 ° С, експозиція 15 хв). Після цього інструменти миють ершом або ватно-марлевим тампоном в миючому розчині протягом 30 сек, споліскують проточною водою, кип'ятять протягом 5 хв в дистильованої води і сушать гарячим повітрям при температурі 85 ° С. Якість передстерилізаційного очищення інструментів оцінюють шляхом постановки ампдопіріновой, бензідіповой (рідше орто-толуїдиновим) і фенолфталеїнової проб на наявність залишкових компонентів миючого препарату і крові. При позитивній пробі на кров або миючі засоби вся група контрольованих виробів підлягає повторній обробці до одержання негативного результату.
Вироби медичного призначення, що використовуються при проведенні гнійних операцій або маніпуляцій у інфікованих хворих, перед предстернлнзаціонной очищенням проходять дезінфекцію. Вироби з корозійно-нестійких матеріалів знезаражують переважно кип'ятінням в 2% розчині гідрокарбонату натрію протягом 30 хв, при наявності анаеробної інфекції тривалість кип'ятіння становить 90 хв. Дезінфекцію виробів медичного призначення здійснюють зануренням в 1% розчин хлораміну на 30 хв, 3% перекису водню з 0,5% мийних засобів на 80 хв, 0,1% дезоксоп-1 (по надоцтової кислоті) на 15 хв.
У повітряних стерилізаторах стерилізацію проводять при температурі 180 ° С протягом 60 мні. При стерилізації повітряним методом ріжучі інструменти (голки, леза, скальпелі) НЕ тупляться. Набори інструментів також стерилізують в автоклаві при 1,1 ат протягом 45 хв або 20 хв при 2 ат. Термін збереження стерильності інструментів 3 діб.
Хірургічні інструменти з корозійно-стійких металів та вироби з пластмас (гуми) можна стерилізувати в 6% розчині перекису водню при температурі 18 ° С протягом 360 хв або I80 хв при 50 ° С. Вироби з гуми, пластичних мас і корозійно-стійких металів стерилізують також у 1% розчині дезоксон-1 (по надоцтової кислоті), час обробки 45 ± 5 хв. Дезінфекцію інструментів можна виробляти потрійним розчином (2% формалін, 0,3% фенол, 1,5% двовуглекисла сода) протягом 45 хв, 0,1% розчином сульфохлорантіна і 1% дихлор-1 протягом 30 хв.
Шприци стерилізують в розібраному вигляді: у зв'язку з різним коефіцієнтом розширення скла (циліндра) і металу (поршень) при стерилізації в зібраному вигляді циліндри часто тріскаються. Стерилізацію здійснюють у централізованих стерилізаційних у повітряних стерилізаторах при температурі 180 ° С протягом 60 хв. Шприци зберігають у стерильній упаковці. Бажано користуватися шприцами одноразового користування, що пройшли стерилізацію гамма-випромінюванням або окисом етилену. В амбулаторній практиці можлива стерилізація шприців кип'ятінням протягом 45 хв.
В останні роки знаходять застосування дезінфекція або стерилізація ендоскопів, пластмасових катетерів, перетворювачів та інших виробів за допомогою 2% розчинів глутарового діальдегіду (активатор) і гіпохлориду натрію (інгібітор корозії), що входить до складу препарату сайдекс; термін обробки 45-180 хв. Застосовується також 0,1% розчин тергіціда протягом 30-60 хв.
Сечоводо катетери та ендоскопи можна стерилізувати і одним з раніше запропонованих способів:
1. Приміщення в спеціальні герметичні закриваються стерилізатори, на дно яких кладуть таблетки формальдегіду. Стерилізація забезпечується парами формаліну при експозиції 48 год
2. Опускання на 10 хв в етанол, потім на 5 хв у розчин ціаніду ртуті (1: 1000); перед вживанням протерти етанолом.
Окремі вузли апаратів штучного кровообігу, штучної нирки, респіраторів та інших приладів стерилізують кип'ятінням, у повітряному стерилізаторі, в катіонно-аніонних розчинах або окисом етилену. При користуванні окисом етилену тривалість стерилізації складає 6-16 ч. Перед вживанням вузли апаратів промивають дистильованою водою.
^ СТЕРИЛІЗАЦІЯ перев'язувального матеріалу І операційної білизни
Перев'язувальний матеріал і білизну, використовувані під час операцій і при перев'язках, повинні бути стерильні. В якості перев'язувального матеріалу застосовують марлю, вату і лігнін, основними властивостями яких є хороше вбирання рідин (гігроскопічність), м'яка поверхня і еластичність. Вони повинні добре переносити вплив високої температури під час стерилізації. Найчастіше застосовується марля.
Марля - бавовняна тканина, яка після особливої обробки робиться м'якою, білою, знежиреної і гігроскопічною. Нитки цієї тканини не прилягають один до одного, а розташовані у вигляді дрібної сітки. З марлі роблять бинти різної ширини, серветки, тампони, кульки та ін Більш щільна марля менш гігроскопічна. Складаючи серветки, кульки, тампони і т. п., необхідно загорнути краї марлі всередину, щоб шматки ниток не потрапляли в рану і не перешкоджали її загоєнню.
Вату як білу (гігроскопічна), так і сіру (негігроскопіческая) роблять з бавовни. Обмежено застосовується і вата з штучних волокон. Великою перевагою білої вати є її гігроскопічність, однак при перев'язках вату завжди укладають над марлею через її властивості прилипати до поверхні і краях рани.
Лігнін виготовляють з деревини, він на рідкість гігроскопічний, однак у присутності ранового обділяє розкладається, що перешкоджає його широкому застосуванню.
В якості операційної білизни використовують великі і малі простирадла, серветки, рушники, пелюшки, халати для медичного персоналу, нарукавники, маски, шапочки і т. д.
Перев'язувальний матеріал і операційний білизна стерилізують в автоклаві при високій температурі під тиском пари 1,1 ат протягом 45 хв (температура 120 ° С) або 2 ат протягом 20 хв (132 ° С). Найбільш зручні для стерилізації та зберігання матеріалу стерилізат-ційних коробки з фільтром і металеві барабани або бікси Шиммельбуша - металеві коробки різної величини і форми з кришкою і отворами з боків (рис. 21, 22). Ці отвори відкривають під час стерилізації, пересуваючи навколо бікса металевий ободок. Перев'язувальний матеріал або операційний білизна укладають в металевих біксах (іноді в брезентових мішках) так, що кожен предмет займає певний сектор.
Після завершення стерилізації металевий ободок бікса тут же закривають. Бікси зберігають у закритому приміщенні, ключ від якого знаходиться у старшої операційної сестри. Термін збереження стерильності перев'язувального матеріалу або операційного білизни в біксах становить 3 доби. Стерилізація перев'язувального матеріалу і операційної білизни в повітряних стерилізаторах при температурі 180 ° С не придатна, тому що матеріал псується.
^ СТЕРИЛІЗАЦІЯ РУКАВИЧОК
Для стерилізації гумових рукавичок користуються такими методами:
1. Пересипають їх пудрою або тальком, загортають в марлеву серветку, укладають у бікси Шиммельбуша і стерилізують у паровому стерилізаторі при температурі 120 ° С під тиском 1,1 ат 45 хв.
2. Рукавички кип'ятять у воді 45 хв.
3. Рукавички занурюють у розчин детергентів на 60 хв.
4. Стерилізують рукавички в портативних газових стерилізаторах окисом етилену.
Гумові рукавички після використання миють під проточною водою з милом, дезінфікують в 1% розчині хлораміну 30 хв, прополіскують в проточній воді і сушать. При можливості краще користуватися рукавичками одноразового користування, їх стерилізація здійснюється гамма-променями.
^ СТЕРИЛІЗАЦІЯ шовний матеріал
Хірургічний шовний матеріал повинен бути стерильним, міцним на розрив і добре переноситися тканинами, а після виконання своєї фіксуючою функції по можливості розсмоктуватися. Стерилізація шовного матеріалу досягається різними способами: термічним, хімічним, гамма-опроміненням. Нитки зберігаються в стерильному вигляді в пластикових упаковках або упаковках з алюмінієвої фольги. Випуск і стерилізація шовного матеріалу в упаковці для багаторазового застосування небажані.
За будовою нитки можуть бути монофіламентний (монолітні), крученими або плетеними. Більш доцільно використовувати монофіла-ламентние синтетичні нитки, які через відсутність гнотового ефекту перешкоджають поширенню інфекції. У атравматичних голках (не мають вушка) кінець нитки закладається в порожнистий тупий кінець голки.
Шовкові нитки є природним продуктом; в даний час випускають також синтетичний шовк. Вони виготовляються плетеними або крученими і мають виражений гнотовий ефект, тобто здатність переносити рідина і що містяться в ній бактерії; їх перевага - велика міцність. Шовк не розсмоктується,. Товщина шовкових ниток різна, від 00 до 16 (чим більше номер, тим товще нитка).
В даний час медичної промисловістю в окремих випадках ще випускається шовк у мотках для багаторазового застосування, Стерилізацію шовку в подібних випадках проводять таким чином.
1. Мотки шовку миють у теплій воді з милом, потім висушують. Намотаний на котушку шовк опускають в ефір на 12-24 год для знежирення. Після вилучення стерильним інструментом з ефіру шовк занурюють на той же термін у 70% етанол, після чого шовк кип'ятять 10 хв. Зберігають стерильний шовк в герметично закритих банках з 95% етиловим спиртом (метод Кохера). Перед вживанням підготовлений за даною методикою шовк повторно кип'ятять 2 хв.
2. Мотки шовку розкручують і миють два рази в мильній піні, після чого кілька разів прополіскують в теплій воді, сушать і намотують на стерильні котушки. Знежирюють в ефірі протягом 12 - 24 год, після чого кип'ятять у дистильованій воді 45 хв. За допомогою стерильних інструментів шовк занурюють у герметично закриті банки з 95% спиртом на 6-12 год, після чого він придатний до застосування. У герметичних банках спирт міняють через кожні 7 днів.
Капронові і лавсанові нитки багаторазового застосування стерилізують у паровому автоклаві, як операційний білизна, або кип'ятінням, як інструменти протягом 45 хв.
Нерозчинні атравматичні нитки зі штучних синтетичних волокон виготовляють з поліамідних (найлон, капрон, перлон,
супрамід) або поліефірних (дакрон, мерсілен, тефлон) волокон. Вони перевершують природні нитки по міцності і відсутності реакції тканин, стерилізуються гамма-опроміненням або окисом етилену.
Кетгут є матеріалом органічного походження. Виготовляють кетгут з підслизового шару тонких кишок великої рогатої худоби або свиней. Як гетерогенний білок, він може викликати сильну реакцію тканин. Перевагою кетгуту є те, що через 6-12 днів він резорбируется в організмі. За рахунок хромування (хромований кетгут) резорбція кетгуту в організмі може бути продовжена до 15-40 днів. Задубленності кетгут не токсичний. Хромований кетгут випускається в ампулах або в упаковці з алюмінієвої фольги з консервирующим розчином (спирт ректифікат 96% 89 мл, гліцерин 6 мл, бензин авіаційний 1 мл, вода дистильована 4 мл), стерилізація гама-опроміненням.
Полімери гліколевої кислоти (дексон) або поліпропілен (протока), а також вікрил є штучними розсмоктується нитками. Розсмоктуються синтетичні нитки мають перевагу перед кетгутом, особливо при роботі в інфікованій рані.
Металеві дужки і шовні нитки зі сталі мають підвищену міцність, стерилізують їх термічним способом (кип'ятінням) або гамма-опроміненням.
ДЕЗІНФЕКЦІЯ
Дезінфекція досягається за допомогою хімічних та фізичних методів.
Під фізичними методами розуміють використання сухого жару або водяної пари, кип'ятіння, ультрафіолетове опромінення. Найбільш наочним прикладом застосування їх є використання водяної пари під підвищеним тиском для дезінфекції матраців та термолабільних текстильних виробів. Для цього використовують спеціальні пароформалінові камери.
Для хімічної дезінфекції встановлено наступні вимоги: надійне і швидке дію проти всіх патогенних мікроорганізмів, стійкість розчинів на повітрі і на світлі, нешкідливість для людини і тварин, хороша переносимість матеріалів і корисний ефект при найменшій концентрації. Слід взяти до уваги, що універсального дезинфікуючого засобу не існує. Крім розчину йоду спороцидно дію має тільки надоцтова кислота (дезоксон-1).
В останні роки в області дезінфекції розробляються нові принципи, проте як і раніше основне значення має хірургічна дезінфекція рук та дезінфекція операційного поля.
^ ХІРУРГІЧНА ДЕЗІНФЕКЦІЯ РУК
Метою хірургічної дезінфекції рук є надійне звільнення їх від мікроорганізмів на тривалий термін. Підготовка рук хірурга та його помічників до операції сполучена з великими труднощами в зв'язку з неможливістю використовувати для цього високу температуру і концентровані розчини антисептиків. Особливу утруднено знезараження рук від мікробів, що скупчуються у вивідних протоках сальних, потових залоз і у волосяних мішечках. У зв'язку з цим поряд зі змиванням бактерій і знищенням їх на поверхні шкіри антисептиками всі методи включають як обов'язковий компонент дублення шкіри, щоб звузити пори і перешкодити проникненню цих мікробів на її поверхню під час операції.
Дуже важливі догляд за руками і попередження їх забруднення. Прагнення захистити шкіру рук від різних травм, пошкоджень і забруднень повинно бути предметом постійної турботи для тих, хто бере участь в операції; нігті завжди повинні бути коротко пострижені і чисті.
Принцип хірургічної дезінфекції рук - спочатку механічне очищення, а потім дезінфекція. Кисті та передпліччя попередньо обробляють протягом 2-5 хв милом і щіткою. Особливу увагу приділяють обробці нігтьових лож, складок шкіри, міжпальцевих проміжків. Після цього руки обполіскують і витирають стерильними серветками. На заключному етапі використовують дезінфікуючі засоби, які повинні відповідати наступним вимогам: 1) швидко вбивати патогенну мікрофлору; 2) надійно вбивати мікроби в перчаточном соку, щоб руки залишалися знезаражені протягом всієї операції; 3) володіти кумулятивну дію, щоб руки хірурга залишалися збідненими мікроорганізмами і в проміжках між процедурами дезінфекції; 4) не надавати дратівної дії на шкіру.
Класичні способи обробки рук по Фюрбрінгера (Р. Furbrin-ger, 1897), Спасокукоцький-Кочергіну (1929) та інші в даний час залишені, оскільки вони займають багато часу. Застосовуються прискорені методи хірургічної дезінфекції рук.
/. Обробка рук розчином перекису водню і мурашиної кислоти (1970). Рецептуру «С-4» готують в день операції з необхідної кількості 30-33% перекису водню (пергідролю) і 85-100% мурашиної кислоти, які змішують у стерильному посудині у співвідношенні 1: 2,4 і зберігають не більше доби в посуді з герметичною пробкою в прохолодному місці. Для обробки рук використовують 2,4% розчин рецептури «С-4». Перед обробкою рук розчином рецептури «С-4» їх миють водою з милом (без щітки) протягом 1 хв, витирають насухо стерильною серветкою, потім руки обробляють протягом 1 хв рецептурою «С-4» в емальованому тазу, витирають стерильною серветкою і надягають стерильні рукавички (рис. 24, 25).
2. Обробка рук хлоргексидин біглюконат (1977). Для обробки рук використовують 0,5% спиртовий розчин препарату (препарат розводять у 70% спирті у співвідношенні 1:40). Після попереднього миття рук з милом і подальшого протирання стерильною марлевою серветкою проводять їх обробку двома ватними тампонами, змоченими в 0,5% спиртовому розчині хлоргексидину, протягом 2-3 хв.
Можлива обробка рук і 1% водним розчином (1:20) хлоргексидину в стерильному тазу протягом 3 хв. Робочий розчин готують, розводячи 500 мл 20% оригінального розчину препарату в 10 л дистильованої води.
3. Обробка рук миючими засобами (1960). Після попереднього миття рук з милом їх на 3-5 хв занурюють у таз з миючим засобом (ОП-7, «Новина», «Астра»). Розчин миючих засобів готують безпосередньо перед застосуванням (1 столова ложка порошку на 3 л теплої води). Після висушування рук стерильною серветкою їх протирають протягом 3 хв 95% етанолом.
4. Обробка рук дегмін і дегміцід (1968). Руки перед обробкою дегмін або дегміцід миють теплою водою з милом протягом 2-3 хв, ретельно обполіскують їх і протирають двома тампонами, рясно змоченими 1% розчином препарату, по 3 хв кожним. Після цього стерильними серветками витирають руки досуха і надягають стерильні рукавички.
5. Обробка рук церігелем (1971). Препарат містить цетілпірііній хлорид - катіонний детергент, що володіє великою поверхневою активністю Безбарвна опалесцююча рідина церігеля, нанесена на шкіру, після випаровування спирту утворює тонку щільну асептичну полімерну плівку (вплив полівінілбутіраля).
Після попередньої обробки рук милом на суху шкіру наносять 3-4 г церігеля і протягом 8-10 з ретельно розтирають так, щоб препарат покрив долонні і тильні поверхні, міжпальцеву і дистальну третину передпліччя. Руки висушують на повітрі або під вентилятором протягом 2-3 хв, стежачи за тим, щоб пальці не стикалися і були злегка зігнуті. Спосіб обробки рук ефективний у есренних ситуаціях, під час роботи в перев'язочній, при первинній хірургічній обробці ран і т. п. Полімерна плівка змивається з рук після операції або маніпуляції 95% етиловим спиртом.
6. Обробка рук йодофори (1972). Дуже ефективним і швидким способом є обробка йодофори (1% йодопірон-полівінілпіролідон, повідон-йодином-бетадин) і гексахлорофеном в мильному розчині (шампунь) протягом 3-5 хв. Одночасно досягається очищення та дезінфекція шкіри рук, після чого їх висушують серветкою і надягають стерильні рукавички.
7. Обробка рук ультразвуком. Сконструйовані спеціальні апарати з ультразвуковими ваннами, в яких миття і дезінфекція рук відбувається протягом 1 хв. Руки занурюють у розчин антисептика (0,05% водний розчин гибитана), через який пропускаються ультразвукові хвилі, які і забезпечують дезінфекцію.
^ Надягання ОПЕРАЦІЙНІЙ ОДЯГУ
Медичний персонал (хірург, асистенти, операційні сестри) після хірургічної дезінфекції рук надягають стерильні (вільні від мікроорганізмів) халати, покривають також руки до кисті і спину. Для операційних халатів не підходить пухкий текстильний матеріал, багаторазово був у вжитку, так як він стає проникним для поту і бактерій, що містяться на шкірі членів операційної бригади (з'являються на халаті вже через 30 хв роботи). Найкраще використовувати білизну та халати з щільного импрегнірованого бавовняного матеріалу (рис. 26). Манжети костюма і зав'язки повинні бути еластичними і не здавлювати зап'ястя і кисті. Маска повинна щільно закривати рот і ніс.
Після хірургічної дезінфекції рук мікроорганізми на шкірі відсутні. Однак незабаром з проток потових залоз, волосяних мішечків, мікротріщин на поверхні шкіри знову з'являються мікроорганізми, тому з метою асептичного проведення операції необхідно ізолювати руки стерильними гумовими рукавичками (рис. 25). При надяганні рукавичок не можна доторкатися до їх зовнішньої поверхні оголеною рукою.
Під час роботи в рукавичках руки стають вологими, в рукавичках скупчується так званий рукавичок сік, який містить концентрат вірулентною мікрофлори, тому й перед операцією і під час її необхідно звертати пильну увагу на цілість рукавичок. Пошкоджену рукавичку необхідно негайно ж змінити. Якщо операція тривала, під час роботи через кожні 45-60 хв рукавички обробляють 2,4% розчином первомура і протирають 96% етиловим спиртом. Щоб рукавички легко знімалися і надягали, кисті і внутрішню поверхню рукавичок слід обробити стерильною пудрою. Пудра, виготовлена на основі крохмалю, повністю резорбується, тому вона має перевагу перед тальком.



Рис. 25. Надягання хірургічних рукавичок



Рис. 26. Схема надягання хірургічного халата
^ ДЕЗІНФЕКЦІЯ ОПЕРАЦІЙНОГО ПОЛЯ
Підготовка операційного поля починається в передопераційному періоді (гігієнічна ванна, очищення забруднень ефіром або бензином, обробка шкіри зеленим або калієвим милом, гоління волосся в області операційного поля).
Для обробки шкіри операційного поля в даний час найчастіше застосовують йодонат, йодопірон, хлоргексидин біглюконат. Робочий розчин йодоната готують ex tempore шляхом розведення вихідного розчину в 4,5-5 разів кип'яченої або стерилізованої водою. Шкіру операційного поля без попереднього миття спиртом обробляють двократним змазуванням стерильними тампонами, змоченими розчином йодоната або йодопірона (1% по вільному йоду), або 0,5% спиртовим розчином хлоргексидину біглюконат. Як показали численні дослідження, що міститься в спиртовому розчині йод дубіт шкіру, однак недостатньо дезинфікує її, тому цей метод, колись традиційний, не застосовують.
Для обробки операційного поля використовуються і інші антисептичні речовини (1% розчин дегміцід, 1% розчин Роккан або катаміна А-Б, 2,4% розчин первомура). Для дезінфекції слизових їх змащують 1% розчином діамантового зеленого, 3% розчином перекису водню, 1% розчином йодоната або йодопірона, а також 0,5% спиртовим розчином гибитана.
Для ізоляції шкіри операційного поля застосовують спеціальну стерильну плівку (протектор).